علائم پژمردگي باكتريايي سیب زمینی

 علائم بيماري پژمردگي باكتريايي وابسته به عوامل محيطي مانند درجة حرارت، نوع گياه و مرحلة رشد آن مي‌باشد. اولين علائم بيماري در بوته‌ها بصورت پژمردگي مختصر بروز مي‌نمايد، پس از مدتي برگها تغيير رنگ داده به رنگ سبز روشن و سپس زرد مشاهده مي‌شوند. در يك بوته آلوده ممكن است ابتدا يك ساقه علائم پژمردگي را ظاهر سازد اما با توسعه سريع بيماري تمام بوته به سرعت و بدون تغيير رنگ پژمرده مي شود،  برخي مواقع دستجات آوندي قهوه‌اي شده و ساقه‌ها خط‌دار مي‌شوند، اين علائم كه حاكي از فعاليت باكتري در سيستم آوندي گياه مي‌باشد، ممكن است در هر مرحله از رشد گياه بروز نمايد. پژمردگي گياه با گذشت زمان به حدي شدت مي‌گيرد تا گياه از بين برود. وجود باكتري را براحتي مي‌توان در ساقه رديابي نمود بدين صورت كه از قسمت پايين ساقه برشي ايجاد نموده و ساقة آلوده در ليوان آب قرار داده مي‌شود پس از چند دقيقه رشته‌هاي شيري رنگ حاوي باكتري از ساقه خارج مي‌شود (جعفرپور، 1370 و Kelman, 1981) .

غده‌هاي آلوده ممكن است داراي علائم باشند يا هيچگونه علامتي از بيماري نداشته باشند (Martin,1981). در غده‌هاي آلوده در صورت بروز علائم اغلب تغيير‌رنگ در سيستم آوندي غده‌ها ديده مي‌شود كه با يك فشار ملايم، ترشحات لزج سفيد مايل به خاكستري از حلقه آوندي خارج مي‌شود. در صورت بروز آلودگي شديد، اين ترشحات در چشم‌ها و جوانه غده‌ها مشاهده مي‌شوند كه باعث چسبيدن ذرات خاك به اين نواحي مي‌گردند (جعفرپور، 1370 و Kelman, 1981).

 

آزمون DAS – ELISA برای شناسايي ویروس BCMV

مراحل آزمایش:

 

1) رقیق کردن IgG خالص به نسبت 1:500در بافر کربنات (Coating buffer)

 

Coating buffer (pH 9.6) for 1000 ml

          Na₂CO₃       1.59 g

          NaHCO₃      2.93 g

          NaN₃           0.20 g

مواد بالا ابتدا درون ml900 أب حل مي شوند، پس از تنظیم pH با HCl يا NaOH حجم نهايي به 1 ليتر مي رسد.

 

2) افزودن lµ 100 از IgG رقيق شده درون هر چاهک

 

3) قرار دادن پلیت الیزا در انکوباتور با دمای cْ 37 براي 4-2 ساعت، پس ازپوشاندن آن با پارافیلم

و يا قرار دادن آن در یخچال با دمای cْ 4 براي يك شب

 

4) شستن چاهک ها با بافر شستشو (Washing buffer)، سه بار و هر بار 5 دقیقه

 

PBS (pH 7.4) for 1000 ml

          NaCl            8        g

          KH₂PO₄       0.2     g

          Na₂HPO₄     1.15   g

          KCl             0.2     g

          NaN₃           0.2     g

 

PBS-T

PBS + 0.5 ml Tween20 for 1000 ml (50 µl for 100 cc)

 

5) تهیه عصاره گیاهی درون هاون چینی سرد با خرد کردن نمونه های برگی در بافر استخراج با نسبت 1:1

 

Extraction buffer

          PBST + 2% PVP (2 g for 100 ml)

 

6) افزودن lµ100 از عصاره هر نمونه به هر چاهک

 

7)پوشاندن پلیت با پارافیلم و قرار دادن پلیت الیزا در دمای cْ 4 به مدت یک شب

 

8) شستشوی چاهک ها با بافر شستشو، سه بار و هر بار 5 دقیقه

 

9) رقیق کردن آنتی بادی متصل به آنزیم (IgG^_conjugate) به نسبت 1:500در بافر ترکیب پادتن^_آنزیم

 

Conjugate buffer

          PBST

          PVP 2%

          Egg albumine 0.2%

 

10) ريختن lµ 100 از IgG^_conj. رقيق شده در هر چاهک

 

11) پوشاندن پلیت با پارافیلم و قرار دادن آن در انکوباتور با دمای cْ 37 به مدت 4 ساعت

 

12) شستشوی چاهک ها با بافر شستشو، سه بار و هر با 5 دقیقه

 

13) تهیه محلول تازه سوبسترا از طریق حل كردن یک قرص mg 5 پارانیتروفنیل فسفات در cc 10 بافر سوبسترا

 

Substrate buffer (pH 9.8) for 1000 ml

          diethanolamine       97 ml

          H2O                      600 ml

NaN₃                     0.2 g

پس از تنظیم pH محلول با HCl یا NaOH حجم نهایی محلول به ml 1000 می رسد.

ویروس پیچیدگی زرد برگ گوجه فرنگی

ویروس پیچیدگی زرد برگ گوجه فرنگی از ویروس های مهم جنس بگومو ویروس است که گسترش جهانی داشته و تا 100 % خسارت درمورد آن گزارش شده است. توسعه غیرمنتظره و تدریجی این ویروس در نواحی جنوبی و مرکزی ایران، ضرورت شناسایی دقیق نژادهای این ویروس و بهره گیری از تکنیک های پیشرفته و دقیق در این خصوص و نیز بررسی تغییرات ژنتیکی جمعیت آنها در جهت کنترل مؤثر این عامل بیماری زا را ایجاب می نماید(بهجت نیا، 1383). با توجه به ماهیت غیر قابل کنترل ویروس ها، اصلی ترین راهکار در کنترل آنها عمدتا" بر پیشگیری از وقوع و گسترش آنها با استفاده از مواد تکثیری سالم و عاری از ویروس می باشد.

روش های ردیابی با بررسی روش های انتقال، روش های سرولوژیک نظیر تاس-الایزا و روش های مولکولی نظیر PCR وتعیین توالی نوکلئوتیدی برای شناسایی این ویروس بکار گرفته شده است ((Pico et al.,1999.

اهمیت تولید گیاهان عاری از ویروس

روشهای متعددی برای کنترل بیماریهای ویروسی وجود دارد که همگی معطوف به پیشگیری از آلودگی هستند. زیرا نمی توان آنگونه که برای مبارزه با قارچها و باکتریها از قارچکش و یا باکتری کش استفاده می شود برای ویروسها نیز در سطح مزرعه ای و با صرفه اقتصادی استفاده شود. استراتژی های کلی کنترل بیماری های ویروسی تماماً پیشگیرانه و به منظور جلوگیری از آلوده شدن گیاه در مزرعه و یا استقرار ویروس در منطقه می باشند:

1.        ریشه کنی منبع آلودگی برای جلوگیری از دسترسی ویروس به محصول

2.        کاهش گسترش بیماری با کنترل ناقلین ویروس

3.        بکارگیری گیاهان سالم و کاشت بذور عاری از ویروس

4.        استفاده از گیاهان مقاوم به ویروس

کاشت بذر و نهال سالم یکی از اساسی ترین اقداماتی است که برای پیشگیری از بیماری های گیاهی به ویژه آلودگیهای ویروسی در مزرعه انجام می گیرد. این اقدام، به ویژه در مورد بیماریهای ویروسی که بذر زاد هستند حائز اهمیت بیشتری است. چرا که بذر می تواند مایه آلودگی اولیه برای بیماری باشد و پس از کاشته شدن در مزرعه، بیماری توسط ناقلین دیگر مثل حشرات به گیاهان سالم منتقل شده و تمام مزرعه را آلوده نماید. بنابراین جلوگیری از آلودگی توسط بذر آلوده در این نوع از بیماری ها می تواند در کاهش خسارت محصول و جلوگیری از آلودگی اولیه مؤثر باشد.

در برنامه های به نژادی گیاهان مختلف نیز مقایسه عملکرد ارقام اصلاح شده زمانی به واقعیت نزدیک تر خواهد بود که ارقام و لاین های مورد آزمایش عاری از ویروس باشند. از طرف دیگر در نگهداری و توزیع ژرم پلاسم گیاهان در بانکهای ژن نیز لازم است ژرم پلاسم نگهداری شده در کلکسیون های بانک ژن تماماً عاری از آلودگی باشند تا موجبات توزیع و گسترش آن به مناطق دیگر فراهم گردد.

در تمام موارد ذکر شده تکنیک های درمان گیاهان به منظور حذف ویروس و یا عامل آلودگی از آنها، روش های عاری سازی بذور و اندام های تکثیری دیگر و فرآیند های کشت بافت گیاهی با هدف تهیه گیاهان سالم و به دنبال آن به دست آوردن بذر سالم میتوانند به کمک محققین بیایند.

 

 

 

بهبود رشد گیاه ذرت توسط باکتری های بهبود دهنده رشد در دما ها وخاک های مختلف

                                مریم خسروی نوده   

 

باکتری های رایزوسفر روی رشد گیاه و جذب مواد مغذی ذرت اثر گذاشتند و رشد گیاه را افزایش دادند.مکانیزم های PGPR دراین بررسی پیشنهادشدند.نوع خاک ودما دوتا ازمهمترین فاکتورهای موثر روی کارایی باکتری های بهبود دهنده رشد گیاه هستند.

 

    مواد و روش:

خاک سند لوم(المان)و کلسی سول(ازبکستان)که مقدار Mg,K,P,C خاک هاتوسط روش های ازمایشگاهی مختلف اندازه گیری شد. همچنین PH خاک و پراکنش ذرات خاک . بذر ذرت که از یک مرکز تحقیقات کشاورزی تهیه شده بود.

 

    نتایج:

باکتریهای رایزوسفر Agrobacterium spp,Pantoea spp,Azospirillium spp,Pseudomonas spp رشد گیاه و جذب مواد مغذی را در ذرت  گندم و لگوم ها افزایش دادند. مطالعات روی اثر خاک ها و دماهای مختلف روی کارایی باکتری های بهبود دهنده رشد گیاه انجام شد. ابتدا خاک ها از دو اقلیم متعادل (المان :lomy sand ) و نیمه خشک (ازبکستان: calsisol ) شناسایی شدند.سپس ازمایشات تلقیحی بر روی خاک ها در دماهای مختلف انجام شد. بدین صورت که باکتری ها از خاک ناحیه ریشه گندم(رایزوسفر) جدا سازی شده و سوسپانسیونی از انها تهیه کرده و سپس برروی یک محیط کشت گلیسرول- پپتون اگار کشت داده شدند. بعد از مدتی استرین های باکتریایی جدا و شناسا یی شدند.این استرین های جدا شده را در ازمایشات گلدانی و مزرعه در خاکهای دارای درشت مغذی lomy sand و ریز مغذی calsisol بکار

بردند. گیاهان در گلدانها تحت شرایط طبیعی باز در دمای 38-36 (روز ) و 24-20 شب (تابستان) که با  g 500 خاک پر شده بودند رشد کردند.رفتارهای تلقیح باکتریایی در این ازمایشات 8بار تکرار شدند.در4هفته بعداز جوانه زنی بذرها جوانه هاوریشه راخشک کردند وگنجایشK,P,Nدر ماده خشک جوانه وریشه گیاهان مطالعه شد.درمزرعه کود قبل ازکشت بایک اسیاب باخاک مخلوط شده بود وبذر گیاهان که بافراورده های باکتریایی تلقیح شده بودند کشت شدند.وگنجایشMg,k,P,N در ماده خشک ریشه و جوانه گیاه مطالعه شدند. ازمایشات تلقیح نشان داد که در دماهای مختلف  باکتری های بهبود دهنده رشد گیاه که از اقلیم های متعادل جدا شده بودند در 16 درجه سانتی گراد  از 26  درجه بیشتر موثر بودند و باکتریهای اقلیم نیمه خشک در 38 درجه    از  16 درجه بیشتر موثر بودند. این ازمایشات بهبود رشد گیاه و افزایش جذب مواد مغذی گیاه را در خاکها و دماهای مختلف توسط باکتریهای بهبود دهنده رشد نشان داد.

مولوی

                     پس چرا علمی بیاموزی به مرد        کش بباید سینه را ز آن پاک کرد

                   چون مبارک نیست بر تو این علوم     خویش را گولی کن و بگذر زشوم

                  ای بسا عالم ز دانش بی نصیب        حافظ علم است آن کس نی حبیب

به نام مهربان ترین

خدمت همه دوستان

همواره آنچه پیش روی شما قرار دارد آن بهترین گزینه است هیچگاه نرسیدن به هدفی شما

 را از کوشش مایوس نکند زیرا قدرت و عزت و سربلندی از آن پروردگار است و تنها اوست که

 بر سرنوشت ما حاکم است و او بزرگترین خیر خواه است.چه بسا آنچه که ما به دنبال

آنیم بهترین گزینه زندگی ما نباشد

میثم

لکه قهوه ای سویا soybean brown spot

بیماری ناشی از قارچ Mycosphaerella uspenskajae (آنامورف:Septoria glycines ) که نشانه آن تشکیل نقاط و لکه های کوچک قهوه ای روی دو طرف برگ و زردی و ریزش برگ است. این لکه ها ممکن است روی ساقه، نیام ودانه نیز تشکیل شود.

plantpathology.net 

تنوع نژادهاي فرانيكا

                     سودابه يدالله نژاد – فائزه حيدري(علوم خاك 84)

  تنوع کم ژنتیکی درمیان نژادهای فرانیکا

                           

   حداقل 200 نوع ازگیاهان جنگلی که نماینده 24 نوع از8 خانواده گیاهی هستند نژاد های فرانیکا میزبان خود را با منبعی ازتثبیت نیتروژن که درنودال های ریشه زندگی می  کندفراهم می کند.  درعوض میزبان کربن ثابت نژاد های فرانیکا را فراهم می کند.اهداف ما دراین کار3 چیزبود: 1) تا تنوع نژادهای فرانیکا  گروه 1  اکتینوریزال تکسا را درقله های غرب سریا درنوادا درکالیفرنیا را بررسی کنيم . 2) تا انواعی ازنژادهای فرانیکا را که اعضای روزاسه را درمحدوده ی مشابه الوده    می کند را بررسی کنیم .    3) تا گروه 1 فرانیکای میزبان به خصوص درمکان هایی که گونه های متعدداکتینوریزال به صورت هم ناحیه رشد یافتند را ازمایش کنیم .   تنها در2 تحقیق قبلی که تنوع فرانيکا را درگونه های هم بوم (هم شخصیت) alzihroʼnітсA 2 ازمایش کردند.هردوفرانيکای sunlA عفونت زا دراین ازمایش دخیل بودند ونتایج دوتحقیق منجربه نتایج متفاوتی شده است کلاوسون (1999) دریافت که میکروب                            brMi  ac inavlysnep  aciryM با نژادهای مشابه یا بسیارمرتب گره دارشده بود که منجربه این نتیجه می شود یک نژاد می تواند برروی بیشتراز1 گونه میزبان دریک منطقه خاص مسلط شودازسوی دیگرهوگودریافتند که دریک توده هم بوم ازهرگونه گیاه به نماینده ژن       (نژاد مانه) مجزای فرانکیای گره دارمی شود وگروه 3 فرانيکا درنودال های aidrehpehs ساکن می شود اما elag aciryM   و   cana ni sunlA که مستعد میزبانی برای نژاد های مشابه هستند (قابلیت میزبانی نژادهای مشابه دارند) ظاهراً این کاررا درزمین انجام نمیدهند نتایج ها نشان می دهد یگ گروه مرتبط نژادهای فرانکیا روی همه گونه های اکتینوریزال که   مرتبط با گروه 1 فرانکیا درمناطقی هستند که انها را ازمایش کردیم مسلط هستند همانطورکه اشاره شد گرچه بررسی بیشتری مورد نیاز است تا اندازه ای ازبازتاب مشاهدات ما درباره کمبود تنوع قابل دسترس به همان صورت که در تضاد با تسلط یکی ازچند تن نژادهای        متفاوت است را مشخص می کند به عبارت دیگراگراین یک تآثیر مسلط است از چگونگی تفاوت یک ابگیرازنژاد های ممکن ،ایا ممکن است نژاد برتر انتخاب شود .  دراین زمینه نژاد هایی که ازخوشه های نژادهایی که دراین جا نگه داری کردیم بیرون انداخته شدند؛زمینه سازی شده هستند این نژاد ها در نودال های گیاهان گلخانه یافت می شود گیاهان که با تکه هایی از نودال جمع اوری شده (کوه،بهار،نوادا) و(جنگل های کالیفرنیا) تلقیح می شوند پیشنهاد می دهند تنوعی بیشتری دریافت های جغرافیایی وسیع می توان یافت با این که محیط مصنوعی گلخانه ممکن است فرصتی را برای نژادها فراهم كند تا با گیاهان میزبان القاء یابد قبلآ اشاره شده است که محیط هایی كه گیاهان دران رشد می یابند تعیین می کند کدام نژاد هابرای گره دارکردن موجود می باشد به عنوان مثال اگرچه بوسیله نژاد هایی زیادی ازفرانيکا درگلخانه گره دارشده است ،اما تمایل ان برای رشد درمکان هایی مرطوب ممکن است تنوع نژاد هایی ازنودال ها که درزمین مسکن دارند محدود کند، به طورمشابه نژادهای خاص که آلوده می سازد تمایل دارد تادرنودال های گونه های میزبان برای آن نوع خاکی که درآن رشد می کند پدیدار شود( نادارو1999) درنمونه حاضرخاک های موجود درمکان هایی که درهر دوشکل سنگ های منشا وبه صورت خاک به طورچشم گیری تغییرمی یابد. نودال های جمع آوری شده ،ازخاک بسیارمرطوب کناره رودخانه یافت می شود. نظربه اینکه نودال های جمع شده ازکناردریچه الری خشک بودند. مکان ها همچنین در داشتن ارتفاع واحتمال گیاهان متفاوت اند(جدول شماره2) مکان هایی موردتحقیق ازm700 تا 2800 ارتفاع ازسطح دریا بوده ودرمنطقه جغرافیایی  km212500 کیلو متر مربع پراکنده بودند. نتایج ها حاکی ازآن است که دراین مورد ازفرانکیای مرتبط با شرایط مکانی خاص محیط احتمالآ درتعیین کردن تنوع فرانکیا چندان اهمیت ندارند .تنوع پایین که تاکنون تا سواحل غربی آمریکای شمالی متمرکز شده اند نشان می دهد که هنوز عامل ناشناخته ای ، گوناگونی ژنتیکی فرانیکا را در این محل جغرافیایی نشان می دهد . شاید به این دلیل بود که بعضی تنگه های تحولی فقط انواع گروه فرانیکا را تحت تاثیر قرار می داد .                                                                         

                                                                      

طبقه بندي ريزوبيوم

                                                    مریم خدابنده

تثبيت نيترو‍‍‍ژن توسط بعضي باكتريهاي خاك كه ريزوبيوم نام دارد و در گياهان و بقولات وجود دارد انجام ميشود و از زماني كه نقش ان براي تثبيت نيترو‍‍‍‍‍‍‍‍‍ژن شناخته شد در كشاورزي اهميت پيدا كردند و در سالهاي اخير طبقه بندي انها تغيرات زيادي كرده است. تا سال 1980 ريزوبيوم ها در 6 گونه ي زير طبقه بندي شدند:R.legumimos , R.japonicum,R.meliloti,R.trifolii,R.phaseoli,R.lupini

سپس تكنيك هاي مولكولي در طول 20 سال گذشته به طور قابل توجهي توسعه يافتند و براي توصيف ريزوبيوم قابل دسترس قرار گرفتند كه منجر به تغييرات زيادي در طبقه بندي انها شد.

علم رده بندي كه روابط طبيعي بين موجودات را مطالعه مي كند و انها را به طبقه بنديشان سوق ميدهد رده بندي فيلو فاسيك نام داردكه شرط لازم براي اين طبقه بندي ويژگي هاي موجود ميباشد. مفهوم مركزي علم رده بندي باكتريايي گونه هاي باكتريايي ميباشد.امروزه طبقه بندي باكتريايي بايد روابط فيلوژنيك بين باكتري ها را براي اينكه انها شناخته شوند انعكاس دهند.colwellاساس علم رده بندي باكتريايي جديد را پايه ريزي كرد.او با كامل كردن تكه هاي اطلاعات به دست امده طبقه بندي ويروس ها از فنوتيپ سلولDNAوRNA و اظهار كردن شكل انها اساس علم رده بندي باكتريايي را پايه ريزي كرد.هر تكنيك مورد استفاده در علم رده بندي توان تبعيض خودش را دارد و از نظر گونه جنس خانواده و طبقات بالاتر زمينه ي تقاضا شرايط خاص و تعداد وقوع نژاد ها مجزا ميكند.

در رده بندي كنوني ريزوبيوم ها انها باكتري هاي گرم منفي و ميله اي هستند و از لحاظ فيلو ژنيكي انها به تفكيك فرعي يا بخش جزيي تر الفا پروتو باكتري ها تعلق دارد. گونه ي ريزوبيوم براي اولين بار به دو دسته طبقه بندي شد و اين طبقه بندي در مورد جنس ريزوبيوم كه شامل نژاد هاي در حال رشد سريع و گونه جديد بر روي ريزوبيوم و براي رشد كند انها تشكيل شد.

الف)شاخه ي ريزوبيوم و اگروباكتريوم:شامل چندين زير شاخه است كه هر كدام با چهار جنس ريزوبيومي تطابق دارند كه با ساير گونه ها ادغام شده است.اولين زير شاخه با S.3گونه ريزوبيوم. دومين زير شاخه با گونه ي   sinorhizobiumسومين زير شاخه با گونه ي mesorhizobium تطابق دارد.

ب)شاخه ي ازو ريزوبيوم:كه براي ريزوبيوم جداسازي شده از ساقه ي بقولات گرمسيري خلق ميكند.

ج)شاخه ي برادي ريزوبيوم:گونه ي Bكه شامل ريزوبيوم با رشد كند براي مدت طولاني شرح داده شده بود و ان تنها شامل يك گونه بودB.joponicmكه شامل نژاد هاي گره دار شده از سويا بود.

به هر حال HOLLIS نشان داد كه گروه انها هتروجنس هستند و سه گروه DNA را نشان مي دادند. در طول سالهاي گذشته گروههاي زيادي ازگونه ي برادي ريزوبيوم ها با فنوتيپ ويروس ها ويژگي انها و روش هاي ژنوتيپي شناخته شدند.

 

 

بیماری ها ی مرکبات

بیماری های قارچی مرکبات عوامل بیماری مرگ گیاهچه
چرخه بیماری مرگ گیاهچه کنترل بیماری مرگ گیاهچه
بیماری آلبینیسم ( زالی ) عامل بیماری آلبینیسم
علایم بیماری آلبینیسم کنترل بیماری آلبینیسم
بیماری انگومک ( گموز ) عامل بیماری انگومک ( گومز )
علایم بیماری انگومک ( گموز ) چرخه بیماری انگومک ( گموز )
نحوه مقابله با بیماری انگومک پوسیدگی قهوه ای میوه
علایم پوسیدگی قهوه ای چرخه بیماری قهوه ای
کنترل بیماری قهوه ای سرخشکیدگی شاخه و مرگ درخت
عامل بیماری سرخشکیدگی علایم بیماری سرخشکیدگی
چرخه بیماری سرخشکیدگی کپک سیاه
کنترل بیماری سرخشکیدگی عامل بیماری کپک سیاه
علایم بیماری کپک سیاه چرخه بیماری کپک سیاه
کنترل کپک سیاه آنتراکنوز یا سرخشکیدگی
عامل بیماری آنتراکنوز کنترل بیماری آنتراکنوز
علایم بیماری آنتراکنوز پوسیدگی آرمیلاریایی
علایم پوسیدگی آرمیلاریایی عامل پوسیدگی آرمیلاریایی
چرخه پوسیدگی آرمیلاریایی لکه قهوه ای آلترناریایی
عامل بیماری لکه قهوه ای آلترناریایی عامل بیماری لکه قهوه ای آلترناریایی
چرخه بیماری لکه قهو ه ای آلترناریایی کنترل لکه قهوه ای
پوسیدگی خشک ریشه عامل پوسیدگی خشک ریشه
چرخه بیماری خشک ریشه پژمردگی فوزاریومی
علایم فوزاریومی چرخه بیماری فوزاریومی
کنترل بیماری فوزاریومی گموز دیپلودیایی
عامل گوز دیپلودیایی علایم گموز دیپلودیایی
چرخه کوز دیپلودیایی کنترل گموز دیپلودیایی
بیماری نماتد مرکبات بیماری قارچی پس از برداشت
پوسیدگی تریکودرمایی عامل پوسیدگی تریکودرمایی
چرخه بیماری تریکودرمایی کنترل بیماری تریکودرمایی
بیماری کپک خاکستری عامل بیماری کپک خاکستری
چرخه کپک خاکستری کنترل کپک خاکستری
پوسیدگی پنبه ای مرکبات عامل پوسیدگی پنبه ای مرکبات
علایم پوسیدگی پنبه ای مرکبات کنترل پوسیدگی پنبه ای مرکبات
پوسیدگی سبز میوه ( کپک سبز ) علایم پوسیدگی سبز میوه
عامل پوسیدگی سبز میوه چرخه پوسیدگی سبز میوه
کنترل پوسیدگی سبز میوه بیماری پوسیدگی ترش
علایم پوسیدگی ترش عامل بیماری پوسیدگی ترش
کنترل بیماری پوسیدگی ترش پوسیدگی آبی میوه ( کپک آبی )
عامل کپک آبی علایم کپک آبی
چرخه کپک آبی کنترل کپک آبی
پوسیدگی آلترناریایی عامل پوسیدگی آلترناریایی
علایم پوسیدگی آلترناریایی کنترل پوسیدگی آلترناریایی
پوسیدگی دم میوه دیپلودیایی علایم بیماری پوسیدگی دم میوه
چرخه پوسیدگی دم میوه کنترل پوسیدگی دو میوه آلترناریایی
پوسیدگی دم میوه فوموپیس عامل پوسیدگی دم میوه فوموپیس
چرخه بیماری فوموپیس کنترل بیماری فوموپیس
پوسیدگی آسپرژیلوس عامل پوسیدگی آسپرژیلوس
علایم پوسیدگی آسپرزیلوس کنترل پوسیدگی آسپرژیلوس
کنترل بیماری های قارچی بیماری های ویروسی و شبه ویروسی
بیماری تریستزا علایم بیماری تریستزا
عامل ، نحوه انتقال و چرخه تریستزا کنترل تریستزا
بیماری گرده پسوروز علایم بیماری پسوروز A
علایم بیماری پسوروز B علایم بیماری لکه حلقوی
عامل بیماری و انتقال لکه حلقوی بیماری نقش حلزون
علایم بیماری نقش حلزون بیماری کیسه صمغی ( کیسه گشاد )
عامل بیماری کیسه صمغی کنترل بیماری کیسه صمغی ( کیسه گشاد )
بیماری لکه سبز ( سنگی شدن ) علایم بیماری لکه سبز
عامل بیماری لکه سبز کنترل بیماری لکه سبز
بیماری کریستاکورتیس
علایم ، عامل و انتقال بیماری کریستوکورتیس
بیماری گال چوبی بیماری اگزوکورتیس
علایم ، انتقال ، کنترل بیماری اگزوکورتیس
بیماری کاچکسیا بیماری های مهم ناشی از عوامل پروکاریوتی

امکان استفاده از قارچ Paecilomyces lilecinus بمنظور تکميل نماتد مرکبات Tylenchulus semipene trans در

در اجراي مراحل مختلف اين طرح ابتدا تعداد يکصد گياهچه سه ماهه ليموترش توسط حدود پانصد هزار لارو سن دوم نماتد مرکبات مايه‌زني شد تا گياهچه‌هاي آلوده براي انجام آزمايشات بعدي آماده گردند. براساس مطالعه بعمل آمده پايداري قارچ P.Lilacinus در درجه حرارت‌هاي 15 و 20 و 25 درجه سانتي‌گراد بيشتر از ساير درجه حرارتهاي بکار برده شده بود. در آزمايشي ديگر جمعيت مشخصي از قارچ به خاک بدون گياه و همچنين گياهچه‌هاي سه ماه ليموترش مايه‌زني شد. پس از گذشت 5 ماه جمعيت قارچ در ريز و سفر گياهچه‌ها و همچنين خاک بدون گياه رو به کاهش گذارده و بنابراين قارچ نتوانست در مدت زمان ياد شده بصورت يکي از گونه‌هاي مهم خاک درآيد. در آزمايشگاه عملکرد قارچ P.Lilacinus بر روي تخم‌هاي استريل نماتد مرکبات مورد مطالعه قرار گرفت و درصد پارازيت‌هاي تخم‌هاي جوان توسط قارچ برابر 67 درصد محاسبه شد.

تحقيق روش شناسايي و کنترل تلفيقي بيماري شانکر باکتريايي و مرکبات در مناطق آلوده کشور

در اين تحقيق شناسايي فرمهاي رايج بيماري در مناطق آلوده کشور و تعيين دامنه ميزباني باکتري عامل، اقدام به اعمال روشهاي مختلف کنترل تلفيقي بيماري شامل ريشه‌کني کانونهاي آلودگي، مبارزه شيميايي، فيزيکي و بهداشتي خواهد شد و روشهاي مورد عمل از نظر کارايي و ميزان اثر در کنترل بيماري مقايسه مي‌گردند.

بررسي علل زوال درختان بادام در اثر عوامل بيماريزاي قارچي خاکزاد در ايران

زوال و مرگ و مير درختان هسته‌دار و بويژه بادام از مسائل و مشکلات اصلي درختان بادام در بسياري از مناطق ايران است که در اين ميان نقش عوامل قارچي خاکزاد نظر P.nicotiana, Phytoph. cactorum, Rosellins necatrix, Verticillium dahlis Armillaris melles در بروز اين عارضه اثبات شده است . اگر چه اين عوامل از اثباتهاي بادام‌خيز کشور گزارشي شده‌اند ولي وجود، پراکنش و گسترده فعاليت هر يک از عوامل فوق بطور مشخص و تفکيکي در هر يک از مناطق کشت بادام معمول نمي‌باشد. در اين طرح عوامل قارچي خاکزاد موثر در مرگ و مير درختان بادام در مناطق عمده بادام‌کاري کشور شناسائي و گستره فعاليت هر يک از عوامل فوق مشخص مي‌گردد. حيث اثبات نقش بيماريزائي جرايم‌ها مايه‌زني آنها روي نهالهاي دو و سه ساله انجام ميشود.

بررسي سياهک معمولي ذرت در گرگان

طي بررسيهاي بعمل آمده اسپور قارچ زمستان را بصورت کلاميدوسپور در خاک مي‌گذارند و با مساعد شدن شرايط آب و هوايي اسپورها جوانه زده و در هوا پخش مي‌گردند. طي بررسيهاي گلخانه‌اي و صحرايي با توجه به آلوده‌سازي مصنوعي رقم 301 بيشترين حساسيت را نشان داد و روي رقم 704 کمترين آلودگي مشاهده گرديد. طي آزمايشاتي که انجام گرفت مبارزه شيميايي تاثيري در کنترل بيماري نداشت و تنها کاشت ارقام مقاوم يا متحمل مي‌تواند در کاهش آلودگي و ميزان خسارت موثر باشد.

بررسي تاثير چند ترکيب شيميائي براي کنترل بيماري شانکر باکتريائي مرکبات

Xanthomonas axonopodis p.v citri در چند سال اخير موجب خسارت زيادي در مناطق جنوبي کشور گرديده است . در راستاي سيل به هدف کنترل تلفيقي اين بيماري طي سال زراعي 75-76 چهار بارغ آزمايشي ليموترش در مناطق نودژ، کهنوج، جيرفت در استان کرمان انتخاب و شش تيمار (اکسي‌کلرور پس از 2 در هزار، مخلوط برد و 1/5 و 2 درصد آنتي‌بيوتيک Plantomycin به غلظت 100Ppm، هرس و شاهد) با سه تکرار در قالب طرح و بلوکهاي کاملا تصادفي در نظر گرفته شد. نتايج نشانگر آن بود بهترين شيوه کنترل بيماري در شرايط مناطق آلوده کشور يک نوبت سمپاشي، با مخلوط برد و 2 درصد در زمان تورم‌جوانه‌ها و پس از ريزش گلبرگها سمپاشي با مخلوط برد و 1/5 درصد هر پانزده روز يکبار و بمدت سه ماه مي‌باشد.