مطالعه عامل بيماري بلايت باكتريايي كدوئيان در ورامين و ارزيابي مقاومت تعدادي از ارقام و لاين هاي خيا

داريوش شهرياري ، عبدالله قباخلو ، خديجه حافظ ، حشمت اله رحيميان ، ابوالقاسم قاسمي  

طي سالهاي 1375 تا 1383 در مزارع ورامين علائم لكه برگي و سوختگي به صورت V شكل همراه با هاله زرد رنگ روي گياهان طالبي ، كدو و خيار مشاهده گرديد . در دماي 27 تا 30 درجه سانتيگراد ، گسترش آلودگي به نحوي بود كه موجب سوختگي كامل اندامهاي گياه مي گرديد . در تمامي موارد از نمونه هاي بيمار ، يك باكتري گرم منفي و نيازمند به اكسيژن و فلورسنت جدا و ويژگي هاي فنوتيپي و نقوش الكتروفورزي پروتئين هاي سلولي آنها تعيين گرديد . باكتري جدا شده Pseudomonas marginalis pv. marginalis شناسايي گرديدند ...
کليدواژگان:Pseudomonas marginalis pv. marginalis ، خيار و ارقام مقاوم

ترجمه اسامی درختان

                                                          اشکا

Melon خربزه
Water melon هندوانه
Dew melon گرمک
Musk melon آتشی

Cantaloup طالبی

Orange پرتقال
Sour orange نارنج
Tangerine نارنجی

Apple
Pine apple آناناس

Cherry گیلاس
Blak cherry آلبالو

Berry توت
Straw berry توت فرنگی
Black berry توت سیاه
Mul berry توت سفید
Rasp berry تمشک

Citroon بالنگ
Cedrate ترنج

Coconut نارگیل

Fig انجیر

Date خرما

Olive زیتون

Grape انگور

Peach هلو-شفتالو

Persimmon خرمالو

Apricot زردآلو

Mango انبه

Medlar ازگیل

Pear گلابی

Pome granate انار

Quince به

Sloe-Plum آلوچه جنگلی-گوجه

مطالعه خصوصيات فنوتيپي و بيماري زايي پكتوباكتريوم هاي مولد پوسيدگي نرم در استان خوزستان

    ساغر سلطاني نژاد ، سيدمحسن تقوي ، جمشيد حياتي ، رضا مستوفي زاده قلمفرسا

در طي سال هاي 1380 و 1381 تعداد 63 جدايه باكتري از غده و ساقه هاي آلوده سيب زميني، ريشه هاي آلوده هويج و برگ هاي آلوده كاهو و كلم كه علايم ساق سياه و پوسيدگي نرم را داشتند، از مناطق مختلف استان خوزستان، جداسازي گرديد. كليه جدايه هاي ميله اي شكل، متحرك با تاژك هاي محيطي، گرم منفي، بي هوازي اختياري، اكسيداز منفي، كاتالاز مثبت، قادر به لهانيدن ورقه هاي سيب زميني و از نظر واكنش فوق حساسيت روي توتون، منفي بودند. هم چنين از گلوكز، گليسرول، آرابينوز، لاكتوز، مالتوز، رايبوز، مانيتول، مانوز، زايلوز و فروكتوز توسط اكثريت جدايه ها، اسيد توليد كردند. اين جدايه ها، قادر به احيا نيترات، توليد H2S از سيستئين و توليد استوئين بودند، ولي اوره آز توليد نكردند و به عنوان جنس Pectobacterium تشخيص داده شدند.
بر پايه آناليز عددي خصوصيات فنوتيپي، جدايه ها در چهارگروه قرار گرفتند. جدايه هاي گروه اول، دوم و چهارم براساس خصوصيات بيوشيميايي و فيزيولوژيكي افتراقي به P. chryscmthemi و جدايه هاي گروه سوم به P. carotovorum subsp. carotovorum شباهت داشتند.
نقوش الكتروفورزي بيانگر تنوع و تفاوت قابل ملاحظه اي در بين آن ها بود. براساس درصد تشابه نقوش الكتروفورزي، نيز جدايه هاي نماينده در سه گروه قرار گرفتند كه نتايج حاصل مشابه نتايج به دست آمده براساس خصوصيات فنوتيپي بود.

بررسي اثر چند تركيب شيميايي در القاء مقاومت عليه بيماري سفيدك پودري در خيار

                     عبدالحسين جمالي زواره ، عباس شريفي تهراني

بيماري سفيدك پودري كه عامل آن قارچ Podosphaera fusca است، از بيماري هاي مهم كدوييان است و رايج ترين روش كنترل آن استفاده از قارچكش ها مي باشد. اما اثرات جنبي كاربرد قارچكش ها، يافتن روش هاي ديگري را براي كنترل بيماري ضروري مي سازد كه از جمله آنها القا مقاومت در گياه قابل ذكر است. در اين پژوهش اثر شش تركيب شيميايي اسيبنزولار- اس- متيل (ACI)، اسيد بتاآمينوبوتريك (BABA)، اسيد ساليسيليك (SA)، اسيد نيكوتينيك (NA)، فسفات دي پتاسيم (K2P) و عصاره گياه Reynoutria sachalinensis (Bs) در القا مقاومت در خيار (رقم سوپردامينوس) عليه بيماري سفيدك پودري بررسي شد. براي بررسي اثر تركيبات در القا مقاومت، محلول آنها بر پشت و روي برگ هاي گياه پاشيده شد و 24 ساعت بعد سوسپانسيون اسپور بيمارگر روي گياه مايه زني گرديد. براي بررسي امكان القا مقاومت سيستميك، محلول تركيب بر پشت و روي اولين برگ حقيقي گياه پاشيده شد و 24 ساعت بعد سوسپانسيون اسپور بيمارگر روي اولين و دومين برگ مايه زني گرديد. ده روز بعد ميانگين تعداد لكه بيماري در واحد سطح برگ هاي مايه زني شده محاسبه گرديد. نتايج نشان داد كه كليه اين تركيبات وقتي يك روز قبل از مايه زني بيمارگر روي بوته به كار رفتند، شدت بيماري را كاهش دادند، گرچه ميزان تاثير آنها متفاوت بود. ACI و Rs بيماري را بيش از 95% (نسبت به شاهد) كنترل كردند، BABA و K2P با 50 تا 70 درصد كنترل، تاثير نسبي در جلوگيري از آلودگي داشتند و SA و NA با كمتر از 35% كنترل، تاثير قابل توجهي در كاهش آلودگي نداشتند. از نظر كنترل سيستميك بيماري، ACI كاملا موثر بود، BABA و K2P تاثير سيستميك نسبي نشان دادند يعني كنترل بيماري روي برگ دوم حدود 70 تا 80 درصد كنترل در برگ اول بود. Rs، SA و NA از نظر كنترل سيستميك بسيار ضعيف (كمتر از 30% برگ اول) بودند. در آزمايش هاي مزرعه اي نيز اثر سيستميك اسيبنزولار در كنترل بيماري برابر با موثرترين قارچكش ها يعني پنكونازول و هگزاكونازول بود و با آنها در يك گروه آماري قرار گرفت. مجموع نتايج نشان داد كه ACI وRs تركيبات موثري براي القا مقاومت خيار در برابر سفيدك پودري هستند.

تاثير باكتريهاي آنتاگونيست روي Sclerotinia sclerotiorum عامل كپك سفيد كلزا

                            سيده ليلا اكبري كيارودي ، مصطفي نيك نژاد كاظم پور

در اين تحقيق تاثير تعدادي از جدايه هاي باكتريايي آنتاگونيست عليه Sclerotinia sclerotiorum عامل كپك سفيد كلزا جداسازي شده از منطقه رستم آباد استان گيلان مورد بررسي قرار گرفت و در مجموع 98 جدايه باكتريايي از منطقه ريزوسفر كلزاي آلوده با قارچ فوق الذكر جداسازي شد. 12 جدايه از اين باكتريها با استفاده از روش كشت متقابل (Dual culture) در مقابل قارچ مذكور از خود خاصيت آنتاگونيستي بروز دادند. از اين تعداد 8 جدايه متعلق به باكتريهاي گرم منفي و 4 جدايه متعلق به باكتريهاي گرم مثبت بودند. نتايج حاصل از آزمونهاي افتراقي جهت تشخيص جنس جدايه هاي آنتاگونيست نشان داد كه جدايه هاي P45، P43، P26، P9، P14، P34، P13 و P6 گونه Pseudomonas fluorescens پكتينوليتيك (Pectolytic) و جدايه هاي B20، B24 و B2 گونه Bacillus cereus و جدايه B10 بعنوان Bacillus subtilis تشخيص داده شدند.
در آزمايش تاثير تركيبات فرار جدايه هاي آنتاگونيست سودوموناس و باسيلوس در بازداري از رشد ريسه اي قارچ S.sclerotiorum مشخص گرديد كه كليه جدايه ها قادر به جلوگيري از رشد قارچ مذكور بودند. ترشحات مايع برون ياخته اي و آنتي بيوتيك اين جدايه ها نيز از رشد قارچ مذكور ممانعت بعمل آورد. از سوي ديگر تمامي جدايه هاي P.fluorescens روي محيط كشت King’s B محتوي 5، 50 و 100 ميكرومول كلريد آهن توليد سيدروفور نموده و از رشد Geotrichum candidum ممانعت بعمل آوردند.

گیاهان حساس به فلورید هیدروژن

این گیاهان شامل ذرت هلو و گل لاله بخوص زمانی که برگهایشان خیس باشد حساسند و علائم در تک لپه ای ها در نوک برگ و در گیاهان دو لپه حاشیه برگها به رنگ قهوه ای تا سیاه در میایند

پاسخ به سوال خانم علوی در مورد دی اکسید سولفور

علائم مسمومیت این ماده روی گیاهانی چون یونجه. بنفشهُ کاجُ نخود فرنگیُ پنبه و لوبیا در غلظت کم بصورت کلروز و در غلظت زیاد به صورت سفید شدن مناطق بین رگبرگی مشاهده میشود

Symptoms of ethylene injury

بیماری باکتریایی بلاست مرکبات

 

سیده زهرا ساداتی

 

در اواخر زمستان و اوایل بهار علائم ظاهر می شود که به صورت لکه های آب سوخته روی برگ در محل اتصال به دمبرگ است . شاخه ها در بالای محل آلودگی خشک شده و روی آنها زخم هایی ایجاد می شود که دارای سطح چروکیده وگاها“همراه با  صمغ است  .آلودگی از طریق شاخه به برگ منتقل شده و برگهای آلوده به صورت چروکیده و خشک شده روی شاخه باقی می مانند .زمانی که شدت بیماری کم باشد با تشکیل لایه جداگر در محل اتصال دمبرگ به شاخه، برگها می ریزند. روی میوه لکه های مدوربه رنگ  سیاه یا قهوه ایی دیده می شود کهبه عمق پوست نفوذ کرده به طوری که از قسمت پوست دیده میشود .

راه مبارزه با یخزدگی مرکبات

مبارزه با سرمازدگی http://cals.arizona.edu/pubs/crops/az1222.pdf

تنش یخ زدگی

تنش یخزدگی زمانی پیش می آید که درجه حرارت به پایین تر از نقطه انجماد آب(صفر درجه سانتی گراد)تنزل نماید.در اثر این تنش در داخل بافت ها یخ تشکیل می شود.مکانیزم این عمل به شرح زیر می باشد. یخ زدگی آب بین سلولی باعث منفی تر شدن پتانسیل آب بین سلولی نسبت به درون سلول می شود.با توجه به اینکه آب از محل دارای پتانسیل بیشتر به طرف محل دارای پتانسیل آب کمتر حرکت می کند،بنابراین آب درون سلول به فضای بین سلولی که دارای پتانسیل می باشد حرکت می کند.علت این امر برقرار تعادل پتانسیل آب بین سلولی و درون سلولی می باشد.در این حالت برگ ها و سایر اندام های گیاه حالت پلاسمولیز بخود می گیرند.تا این مرحله گیاه آسیب جدی نمی بیند.در واقع مرگ سلولی زمانی اتفاق می افتد که هوا گرمتر می شود.زیرا با ذوب شدن یخ سلول ها،با توجه به اینکه سلول ها جهت تنظیم فشار باید آب جذب کنند و این جذب باعث بالا رفتن فشار تورگر می شود،فشار زیاد به غشا های سیتوپلاسمی آسیب رسانده و آنرا از چند نقطه پاره می کند و لذا سلول بر اثر پارگی غشا از بین می رود.به همین دلیل گیاهان حساس به تنش سرما مانند ذرت،لوبیا و نیشکر به هنگام قرارگیری در معرض دماهای پایین به صورت شل و خیس در می آیندو غشا سلولی آنها بسیار آسیب می بیند.

چگونه با سرمازدگی و یخزدگی گیاهان مقابله کنیم

سرما و يخ زدگی همه ساله خسارات قابل توجهی را به اقتصاد وچرخه توليد کشورتحميل می کند. بنابر اين برای مقاومت گياهان به سرماويخ زدگي لازم است تا مديريت تنش رعايت شود.
به گزارش خبرگزاري كشاورزي ايران (ايانا) سعيد ترکش اصفهانی_کارشناس ارشد اصلاح نباتات در مقاله اي به بررسي اثرات سرما بر گياهان پرداخته است.
در اين مقاله آمده است: سرما و يخ زدگی ازمهمترين عوامل قهری خسارتزا درمحصولات کشاورزی است وهمه ساله خسارات قابل توجهی را به اقتصاد وچرخه توليدکشور تحميل می کند.
سهم عامل تنش سرما و يخبندان نسبت به ساير عوامل تهديد کننده در زيربخشهای زراعی و باغی از وزن بسيار بالايی برخوردار است و پهنه وسيعي از حاصلخيزترين مناطق توليدی کشور ما و قسمت عمده محصولات اقتصادی مهم کشورهمه ساله در معرض تهديد تنش سرما و يخزدگی قرار دارند.
اين مقاله در خصوص تعريف تنش و عوامل تنش زا مي افزايد: تنش عبارت است از هر گونه انحراف معنی دار از شرايط بهينه برای زندگی موجود زنده، و عوامل تنش زا باعث تغيير و اختلال در فرايندهای فيزيولوژيکی گياهی مي شوند واز اين طريق توليد گياهان زراعی را تحت تاثير قرار مي دهند .
تنش‌هاي محيطي عبارتند از:عوامل بيماري‌زا،علف‌هاي هرز،آفات ،آسيب هايمکانيکی،درجه حرارت،آب،خاك و ...
همچنين انواع يخبندانها كه باعث خسارتهاي زيادي مي شوند عبارتند از: يخبندانهای تشعشعی و يخبندانهای انتقالی.
اين مقاله در خصوص روشهای مقابله با خسارتهای ناشی از سرما و يخبندان مي افزايد: روشهای فعال (کوتاه مدت) و روشهای غيرفعال (درازمدت) برخي از اين روشها هستند.
همچنين آنچه که معمولا در جهت مقابله با سرما و يخبندان انجام مي شود, حفاظت در برابر يخبندانهای تشعشعی است و روشهای حفاظتی نقش چندان موثری برای مقابله با يخبندانهای انتقالی ندارد.
بخاريها- سيستمهای آبياری و ماشينهای باد از مهمترين روشهای حفاظتی کوتاه مدت هستند.
خصوصيات استفاده از بخاريها عبارتند از: بالا بودن هزينه سوخت ،کارآيی بيشتر در باغهای ميوه نسبت به مزارع ، حداکثر کارآيی در شرايط وارونگی دمايی، مزيت تعداد زياد بخاريهای کوچک بر تعداد اندک بخاريهای بزرگ.
همچنين اساس استفاده از سيستمهای آبياری، افزايش ظرفيت و هدايت گرمايی خاک و آزادسازی گرمای نهان آب در هنگام يخ زدن را باعث مي شود،كه انواع ان عبارت است از:
آبياری سطحی (غرقابی و شياری)، آبياری بارانی ، سيستمهای آبپاش(رودرختی و زيردرختی) و آبياری قطره ای.
استفاده از روش ماشينهای بادنيز، تنها در صورت وجود وارونگی دمايی کارآيی استفاده دارند تا به صورت ترکيبی با ساير سيستمهای حفاظتی مورد استفاده قرار گيرند و ميزان کارآيی انها به شدت وارونگی دما بستگي دارد .
ساير روشهای حفاظتی فعال نيزعبارت است از: استفاده از بالگرد، دستگاههای مولد مه، پوشاندن گياه با پوششهای مخصوص،مالچ پاشی، استفاده از
پوشش کف يا فوم، استفاده از سيستم SIS(Selected Inverted Sink )، استفاده از سيستمهای تلفيقی، استفاده از بالگرد سبک در نقاط تجمع هوای سرد در سطح مزارع، پرواز بالگرد در ارتفاع پايين جهت بر هم زدن لايه های وارونگی و پوشش خاک با استفاده از مالچ جهت جلوگيری از هدر رفت گرمای خاک.
انواع سيستم های SIS نيز عبارتند از: دستگاه HEAT DRAGON جهت گرم کردن هوای سرد مجاور سطح زمين، دستگاه HEAT DRAGON جهت گرم کردن هوای سرد مجاور سطح زمين.
مهمترين روشهای حفاظتی غيرفعال نيز عبارتند از: انتخاب مکان مناسب، انتخاب محصول، انتخاب واريته، پوشش زمين، عمليات به زراعی(کوددهی, هرس, شخم,آبياری, تاريخ کاشت, عمق کاشت, و....)، به کارگيری سيتمهای نظارتی جامع مجهز به حسگرهای دمايی و زنگ اخبار(Monitoring)و استفاده از مواد شيميايی است.
بنابراين: اصلاح‌ براي‌ مقاومت‌ به‌ سرما و اصلاح‌ براي‌ مقاومت‌ به‌ يخ‌زدگي‌ (از نظر تئوري‌، عملي‌ و مفهومي)از يکديگر متفاوت است، منظور ازسرما، کاهش دما به حدود صفر درجه سانتيگراد ويا چند درجه بالاتراست که می تواند برحسب نوع گياه ودرجه مقاومت آن، به اندامهای مختلف(گل، برگ، ميوه، جوانه وشاخه) خسارت وارد کند.
اين مقاله گياهان را از نظر طبقه‌بندي انها‌ براساس‌ واكنش‌ آنها به‌ دماهاي‌ پايين‌ ، به گياهان: حساس‌ به‌ سرما، حساس‌ به‌ دماهاي‌ سرد بالاي‌ صفر، حساس‌، حساس‌ به‌ درجه‌ حرارتهاي‌ يخبندان‌ كم‌ يا دماهاي‌ نزديك‌ به‌ صفر درجه‌ سانتي‌گراد، كمي‌ مقاوم‌، زنده‌ماندن‌ در دماهاي‌ انجماد تا -5 درجه‌ سانتي‌گراد، نيمه‌مقاوم‌، زنده‌ماندن‌ در دماهاي‌ انجماد در محدوده‌ -5 تا -10 درجه‌ سانتي‌گراد، بسيار مقاوم‌، زنده‌ماندن‌ در دماهاي‌ انجماد در محدوده‌ -10 تا -20 درجه‌ سانتي‌گراد، خيلي‌ زياد مقاوم‌، گونه‌هاي‌ با حداكثر مقاومت‌ به‌ يخ‌زدگي‌ كه‌ توانايي‌ تحمل‌ سرماهاي‌ بسيار شديد(فراسردي‌) را دارند.
‌اساس ژنتيكي تحمل به‌ سرما عبارت است از: پلی ژن بودن وراثت اکثر صفات مهم اقتصادی از جمله مقاومت به سرما و يخبندان، تحت تاثير محيط بودن اين صفات و دشواری اندازه گيری آنها، متکی بودن مطالعه اين صفات بر روشهای آماری پيچيده و شاخصهای آماری مانند ميانگين, واريانس, کوواريانس, شاخصهای چندمتغيره و.....
استراتژي هاي بهنژادي براي‌ افزايش‌ مقاومت‌ گياهان‌ به‌ سرمانيز عبارتند از: اصلاح تدريجی گياهان برای مقاومت به سرما و يخبندان از طريق کاربرد روشهای مرسوم اصلاحی و انتخاب، انجام هيبريداسيون بين گياهان زراعی و خويشاوندان وحشی آنها که دارای صفت مقاومت به سرما و يخبندان هستند، اهلي‌كردن‌ گونه‌ هاي‌ وحشي‌ كه‌ در محيطهاي‌ سرد به‌ خوبي‌ رشد مي‌كنند از طريق‌ اصلاح‌ و انتخاب‌ براي‌ بهبود صفات ‌زراعي‌ آنها، شناسايي‌ ژن‌هاي‌ مقاومت‌ به‌ سرما و يخ‌زدگي‌، كلون‌كردن‌ آنها و دست‌ورزي‌ ژنتيكي‌ آنها با استفاده‌ از روش‌هاي‌ بيولوژي‌ مولكولي، معرفي‌ ژني‌ خالص و نو به‌ محيطهاي‌ سرد به‌ منظور وسعت‌ بخشيدن‌ به‌ منابع‌ پايه‌ ژني، مثال‌هاي‌ كمي‌ در مورد هيبريداسيون‌ بين‌گونه‌اي‌ شامل‌ گوجه‌فرنگي‌ و گندم‌ وجود دارد.
در جمعيتهاي‌ اصلاح‌ شده‌ و سازگار گياهان‌ مختلفي‌ مانند ذرت‌، تنوع‌ ژنتيكي‌ فراواني‌ براي‌ مقاومت‌ به‌ تنش‌ سرما ديده‌ شده‌ است اما استفاده‌ از نژادهاي‌ خارجي‌ مقاوم‌ نيز موقعيتهاي‌ مناسبي‌ را جهت‌ اصلاح‌ مقاومت‌ به‌تنش‌ سرما در اين‌ گياهان‌ فراهم‌ مي کند .
‌به عنوان مثال در اصلاح‌ سيب‌ زميني‌ مي‌توان‌ از منابع‌ ژنتيكي‌ وحشي‌ مانند گونه‌هاي‌ وحشي‌ سيب‌ زميني‌ مقاوم ‌به‌ يخ‌زدگي‌ به‌ عنوان‌ والد در تلاقي‌ها استفاده‌ كرد.
اين مقاله در پايان مي افزايد: در هر گياه‌ زراعي‌ عملكرد نتيجه‌ نهايي‌ تمامي‌ فرآيندهاي‌ بيوشيميايي‌ و فيزيولوژيكي‌، از زمان‌ سبزشدن‌ تا بلوغ‌ فيزيولوژيكي‌ و تأثيرات‌ متقابل‌ اين‌ فرايندها با محيط است، اختلاف‌ بين‌ عملكرد ثبت‌ شده‌ و ميانگين‌ عملكردها، به‌ عواملي‌ كه‌ از بروز كامل‌ پتانسيل‌ ژنتيكي‌ گياهان‌ جلوگيري‌ مي‌كنند مربوط مي‌شود، براي‌ تعدادي‌ از مؤلفه‌ هاي‌ صفات‌ مقاومت‌ به‌ سرما، تنوع‌ ژنتيكي‌ وجود دارد. تركيبي‌ از مقادير كمي‌ از اين‌ تنوع‌، با برخي‌ ازتكنولوژي‌هاي‌ دقيق‌ اصلاحي‌ كه‌ در اينجا بحث‌ شد، مي‌تواند زمينه‌ را براي‌ دستكاري‌ ژنهايي‌ در زمينه‌هاي‌ ژنتيكي‌ خالص‌ فراهم‌ سازد.
در مناطقي‌ كه‌ گياهان‌ حساس‌ به‌ سرما كشت‌ مي‌شود، هر جا كه‌ دماهاي‌ سرد درطول‌ فصل‌ رويش‌ غالب‌ است‌، اصلاح‌ مقاومت‌ به‌ سرما كه‌ منجر به‌ توليد بهتر در مزرعه‌ مي‌شود، مي‌تواند قسمتي‌ از تفاوت‌ بين‌عملكردهاي‌ بهينه‌ و عملكرد واقعي‌ را كاهش‌ دهد.
اصلاح‌ يك‌ صفت‌ مقاومت‌ به‌ سرما به‌ صورت‌ منفرد نمي‌تواند در يك‌ محيط داراي‌ محدويت‌ از نظر دما، اثري‌ روي‌ عملكرديك‌ ژنوتيپ‌ خاص‌ داشته‌ باشد، بلكه‌ راه‌ بهتر اين‌ است‌ كه‌ چندين‌ صفت‌ مقاومت‌ را در زمينه‌ ژنتيكي‌ مناسب‌ جمع‌آوري‌ كنيم‌ تاژنوتيپ‌هايي‌ به‌ دست‌ آيند كه‌ توانايي‌ توليد را در شرايط دمايي‌ سرد طي‌ فصل‌ رشد داشته‌ باشند.

 

X.C.PV.Pelargonii

                         عاطفه فرامرزی نیا

در سال 1952 اولین کسی بود که نشان داد هم لکه برگی باکتریایی و هم پوسیدگی ساقه به علت وجود Helmer

در سال 1923 توصیف کرد لکه برگی باکتریایی به سبب Blown همان پاتوژن (زانتامونس)است.سی سال قبل

است.لکه برگی ها می توانند اول زیر سطح برگ آشکار شوند جایی که خیلی حبابهای X.C.PV.Pelatgonii

آب سبز مایل به زرد تیره کوچک بر خلاف نور آشکار می شوند که بر خلاف نور می توانند تشخیص داده بشوند

که بر خلاف نور می توانند تشخیص داده بشوند به عنوان لکه های روغنی مایل به زرد.به عنوان وسعت لکه،بافت پوسیده قرمز مایل به قهوه ای می شود و نکروتیک با فرورفتگی سطح زیر برگ می شود.بر خلاف نور لکه های تیره محاط می شوند به وسیله ی هاله ی زرد مایل به سبز.در یک مرحله بندی منطقه اینتر کوستال موثر زرد می     خشک   می شود نزدیک به زمانی که باکنری به ساقه نزدیک(وارد) شده است.petiol شود و می میرد.سرانجام لایه ی برگ و

پوسیدگی ساقه نتیجه یک عفونت پنهانی یا بحرانی است.زیر شرایط اختصاصی،یک ضرب سریع باکتری و پخششان در میان گیاه نتیجه هست.اولین علائم از بیشترین یا کمترین زردی رگبرگک و تورم هست و به وسیله ی یک پژمردگی لایه برگ دنبال می شود.در خاک خشک و در درجه حرارت های کم این مرحله ممکن است برای   به دلیل ثباتشان(ثبات بیشترشان) به آشکاری برگهای p.peltatum  چند هفته طول بکشد.پژمردگی برگهای

نیستند.   p.zonale

اولین علائم ساقه می تواند در پایه های ساقه به وسیله ی رنگ سیاه مایل به قهوه ای بافتی که به سمت ساقه در حرکت است اغلب تشخیص داده شود.اولین لکه ها ممکن است هم چنین نزدیک به دخول باکتری اتفاق بیفتد.

نا حیه های ساقه رنگ شده به تدریج خشک می شود و بعداً گیاه خم می شود.

در رطوبت بالا و با ضرب سریع باکتری پوسیدگی خشک در ساقه اول اتفاق نمی افتد و اما نسبتاً ازهای ازج باکتریایی از ترک ساقه بیرون آمده اند.بر طبق این بافت پوسیده نرم آشکار می شود که بعداً خشک می شود.

Xanthomonas juglandis راه مبارزه :

                                                     مریم قره خانی 

  سمپاشي در ختان با تركيبات مس و يا فراوردههاي انتي بيو تيك مي باشد .در مواردي كه بيماري به صورت اپيدمي ظاهر مي شود سمپاشي با محلول بردو به نسبت 5/.%يا اگرومايسين(استرپتو مايسين 76/1اكسي تترا سيكلين و مس فلزي 4/42 %)به نسبت05/0 و يا مخلوطي از پودر اگرومايسين و مس(استرپتو مايسين 05/0%اكسي تتراسيكلين 005/0%و مس فلزي 5/2%)كه در چهار نوبت به فاصله ده روز كه از گل دهي شروع مي شود بيسيار موثر است .گلهای گردو در مقابل تركيبات مس بسيار حساس اند . بنابراين جهت جلوگيري از گياه سوزي استفاده از تركيبات مزبور بايد با احتياط صورت گيرد .از بين بردن شاخه ها و ميو هاي الوده نيزضرورت دارد

Xanthomonas campestris pv. juglandis

Xanthomonas campestris pv. juglandis

Xanthomonas campestris pv. juglandis

سوختگي سودوماناسي کاريوتا

                                              مهسا قاسم زاده

علائم بيماري سودوماناسي کاريوتا در گياهان زينتي لکه‌هاي آب سوخته، ريز و نيمه شفاف در امتداد رگبرگ‌ها است. لکه‌هاي کامل قهوه‌اي تا سياه بوده و هاله زرد رنگي را در بر مي‌گيرد. اين هاله به عرض 1 تا 2 ميلي‌متر و طول 5 ميلي‌متر بالغ مي‌شود. در غالب موارد آلودگي اوليه در حاشيه برگ‌ها در اثر رطوبت اتفاق مي‌افتد.  

 عامل بيماري:

استرين‌هاي باکتري Pseudomonas avenae است. اين باکتري درم منفي، ميله‌‌اي و داراي يک تا دو تاژک قطبي است.  

 علائم بيماري:

در مدت 7 تا 10 روز بعد از تلقيح در گلخانه در حرارت 18 تا 32 درجه سانتي‌گراد توسعه پيدا مي‌کند. لکه‌هاي آب سوخته اوليه بعد از 5 روز معمولاً ظاهر مي‌شود و زماني که آب پاشي بر روي بوته‌ها بطور پيوسته ادامه پيدا نکند توسعه لکه‌ها متوقف و خشک مي‌گردند.  

  مبارزه:

کنترل شيميايي عليه اين بيماري آنچنان مورد بررسي قرار نگرفته، اما کاهش آب پاشي روي بوته‌ها و هم‌چنين از بين بردن برگ‌هايي که داراي علائم بيماري هستند بعنوان مبارزه زارعي توصيه شده است.  

 

Pseudomons cichorii

                                                   مهسا قاسم زاده 

علائم بيماري:

نشانه‌هاي بيماري لکه برگي و سوختگي سودوماناس تا حدي بسته به ميزبان‌هاي مختلف متفاوت گزارش شده است. لکه‌ها روي گياه ابتدا آب سوخته، قهوه‌اي تيره تا سياه رنگ ديده مي‌شوند و اغلب لکه‌ها با حلقه‌هاي متحدالمرکز از بافت تيره و روشن تشکيل مي‌شوند که تقريباً بوسيله هاله زرد رنگ روشن احاطه مي‌گردند. بيشتر لکه‌ها کروي تا نامنظم بوده و بندرت به رگبرگ‌ها محدود مي‌شوند. لکه‌ها وسيع بوده و بيش از 3 سانتي‌متر قطر دارند. لکه‌ها روي شفلرا و هدرا خرمايي رنگ تا سياه با هاله‌اي از رنگ زرد روشن و بشکل نامنظم ديده مي‌شوند. مركز لكه‌ها خشك، گرد و خرمايي رنگ به نظر مي‌رسد و در شرايط رطوبت زياد پارگي برگ‌ها ديده مي‌شود.
گاهي اوقات علائم بيماري با لکه برگي آلتومريا شباهت دارد. جدا کردن عامل بيماري براي تشخيص دقيق ضروري بنظر مي‌رسد. روي بعضي از ميزبان‌ها آلودگي از دمبرگ شروع شده و در طول رگبرگ‌هاي برگ توسعه پيدا مي‌کند.  

   عامل بيماري:

استرين‌هاي Pseudomonas cichorii بعنوان پاتوژن گياهان زينتي برگي و زينتي گلدار گزارش شده است. اين باکتري معمولاً هوازي، دِرَم منفي، ميله‌اي و با يک تاژک قطبي مشاهده شده است.
گياهان زينتي و بسياري از سبزيجات ميزبانان خوب قارچ سودومون سيکوري هستند. كنسروهاي باد كرده كه حالت كشندگي دارند حامل اين قارچ هستند. بيماري لکه برگي بشدت تحت تاثير حرارت است. شدت بيماري بر روي گل‌هاي شمعداني و داودي در حرارت 28 درجه سانتي‌گراد به بيشترين حد خودش مي‌رسد ولي در حرارت 32 تا 36 درجه سانتي‌گراد بيماري کمتر گسترش پيدا مي‌کند. گياهاني از جمله ديفن باخيا، درخت عشقه، هدرا، سرخس‌ها، ختمي ژاپني، شمعداني و ياسمن به اين بيماري مبتلا مي‌شوند.  

  مبارزه با بيماري:

استفاده از استرپتومايسين سولفات بعنوان يك عامل جلوگيري كننده در منابع علمي موثر گزارش شده است. البته مبارزه زراعي بهترين راه مبارزه است.  

 

  لکه برگي Pseudomonas دراسنا

علائم بيماري:

علائم سودوموناس دراسنا ابتدا به صورت لکه‌هاي سبز تيره و آب سوخته بوده سپس تا قطر 2 سانتيمتر بالغ مي‌شوند. لکه‌هاي مسن‌تر در مرکز قهوه‌اي سوخته هستند و توسط کناره قرمز قهوه‌اي احاطه مي‌شوند و بشکل نامنظم آب سوخته در مي‌آيند. بنابراين آلودگي در هر جاي گياه بجز ساقه آن رخ مي‌دهد و برگ‌هاي پاييني مي‌ريزند.  

 

  عامل بيماري:

Pseudomonas sp. عامل بيماري گزارش شده است. اين باکتري ميله‌اي کوتاه با يک تاژک قطبي است. گونه‌هاي غير فلورسنت برگ‌هاي جوان حساسيت بيشتري نسبت به اين پاتوژن دارند. عامل بيماري معمولاً باکتري تک تاژکي يا چند تاژکي است  

 

  مبارزه با بيماري:

کاربرد استرپتومايسين سولفات و مخلوط هيدروکسيد مس و مانکوزب مؤثر گزارش شده است. همچنين بررسي دقيق و بهداشت قبل از قلمه گيري براي کنترل اين بيماري توصيه شده است.  

لكه مردگي باكتريايي شكوفه گلابي

                                                          فرهاد خاتمی نژاد

pseudomonas syringae pv. syringae

عامل اين بيماری را با دو نشانه مي توان ان را روي درخت گلابي شناخت:
 1)لكه مرد گي در بخش هاي خارجي كاسبرگها دمگلها يا نهنج يا دسته هاي گل كه هنوز سبز رنگند ديده  ميشود و در بعضي شرايط تمام گل سياه ميشود.
۲) عفونت كاسه گل در ابتدا در بافت هاي نوش گل ديده ميشود سپس لكه هاي نكروزي منفرد توسعه مي يابند و تمام گل عفوني مي شود.در مرحله رشد ميوه ها و پس از ريزش گلبرگها لكه هاي سياه در گلگاه ميوه تشكيل مي شود و تمام ميوه نارس مي ريزد و روي ميوه هاي   با قي مانده بر روي درخت لكه هاي نكروزه فرو رفته را مي توان ديد .
اگر برگ گلابي مورد حمله اين بيماري قرار گيرد لكه هاي كوچك روي برگ پديدار شده و همچنين حالت غربالي پيدا مي كند همچنين بيماري ممكن است از شكوفه ها به شاخه ها سرايت كنند وباعث ايجاد زخم هايي شبيه به لكه در شاخه شوند.

Pseudomonas fluorescens

Pseudomonas fluorescens. Notice the multiple flagella that give the cell motility

Pseudomonas tolaasii

جداسازي ، انتخاب و ارزيابي باكتريهاي آنتاگونيست در كنترل بيولوژيك بيماري لكه قهوه اي قارچ خوراكي دكم

           حسين خباز جلفائي ،ابراهيم محمدي گله تپه ، حشمت اله رحيميان  

بيماري لكه قهوه اي باكتريايي ناشي از Pseudomonas tolaasii يك بيماري مهم و شايع در سالن هاي پرورش قارچ خوراكي دكمه اي (Agaricus bisporus) در ايران است. روش هاي مختلفي براي كاهش خسارت و كنترل بيماري از جمله رعايت بهداشت، كنترل شرايط محيطي موثر در توسعه بيماري، به كارگيري مواد شيميايي و عوامل آنتاگونيست براي كنترل بيماري در دنيا به كار برده مي شود. در بررسي حاضر كارآيي تعدادي از باكتري هاي بالقوه آنتاگونيست، جدا شده از منابع مختلف از جمله سطح كلاهك قارچ، خاك هاي زراعي، خزه تورب و كمپوست، براي كاهش ميزان و شدت بيماري، مورد ارزيابي قرار گرفت. از 406 جدايه به دست آمده از خاك و پيت، هفت جدايه در شرايط آزمايشگاه عليه P.tolaasii فعاليت باز دارنده داشته و به هنگام تلقيح توام با تراكم هاي جمعيتي برابر يا ده برابر عامل بيماري زا از تشكيل حفرات فرورفته بر روي قارچ خوراكي جلوگيري كردند.
سه جدايه از اين آنتاگونيست هاي بالقوه كه براساس خصوصيات فنوتيپي P .fluoresences تشخيص داده شدند، در شرايط سالن عليه P. tolaasii فعاليت بازدارندگي نشان داده و به طور مشخص وقوع و شدت لكه قهوه اي را بر روي قارچ هاي پرورش داده شده تحت شرايط توليد تجاري كاهش دادند.

Taxonomic study of bacteria isolated from plants: proposal of Sphingomonas rosa sp. nov., Sphingomon

M Takeuchi, T Sakane, M Yanagi, K Yamasato, K Hamana and A Yokota
Institute for Fermentation, Osaka, Japan.

The taxonomic positions of 10 strains of 3-ketolactose-forming bacteria which were isolated from the roots of plants (Rosa sp., Psychotria nairobiensis, Ardisia crispa, Prunus persica, and apple trees) were investigated. The DNA base compositions of these strains ranged from 64.0 to 65.7 mol%, the isoprenoid quinone of each strain was ubiquinone 10, 3-hydroxy fatty acids were lacking in the cellular fatty acids of these organisms, and all of the strains contained a sphingolipid with the long-chain base dihydrosphingosin. These are characteristics of the genus Sphingomonas. On the basis of morphological, physiological, and chemotaxonomic characteristics, together with DNA-DNA hybridization and 16S ribosomal DNA sequence comparison data, we propose the following four new species of the genus Sphingomonas: Sphingomonas rosa (type strain, IFO 15208) for the strains isolated from rose plants and formerly named [Agrobacterium rhizogenes]; Sphingomonas pruni (type strain, IFO 15498) for the strains isolated from Prunus persica; and Sphingomonas asaccharolytica (type strain, IFO 15499) and Sphingomonas mali (type strain, IFO 15500) for the strains isolated from apple trees. Two strains which were isolated from Psychotria nairobiensis and formerly named [Chromobacterium lividum] were identified as Sphingomonas yanoikuyae strains.

 

Samsonia erythrinae gen. nov., sp. nov., isolated from bark necrotic lesions of Erythrina sp., and d

L Sutra, R Christen, C Bollet, P Simoneau and L Gardan
UMR de Pathologie Vegetale INRA-INH-Universite, 42 rue Georges Morel, BP 57, F-49071 Beaucouze Cedex, France

Bacterial strains isolated from diseased erythrina (Erythrina sp.) trees in Martinique (French West Indies) were studied using phenotypic tests, 16S rDNA sequence analysis and DNA--DNA hybridization. Numerical analysis of phenotypic characteristics showed that these strains formed an homogeneous phenon among plant-pathogenic Enterobacteriaceae, and gave useful and updated information for the identification of these bacteria. Results of DNA--DNA hybridization indicated that strains from erythrina belonged to a discrete genomospecies (89--100% hybridization) and had low levels of DNA relatedness (2--33% hybridization) with reference strains of phytopathogenic Erwinia, Brenneria, Pectobacterium, Pantoea and Enterobacter species. 16S rDNA sequence analysis using three different methods revealed that the position of strain CFBP 5236(T) isolated from erythrina was variable in the different trees, so that strains from erythrina could not be assigned to any recognized genus. It is proposed that these strains are included in a new genus, Samsonia. The name Samsonia erythrinae is proposed for the new species. The G+C content of the DNA of the type strain, CFBP 5236(T) (=ICMP 13937(T)), is 57.0 mol%.

اسلایم در باکتری ها رنگ زرد اطراف سلول های قرمز رنگ

مکانیزم بیماری زایی جنس زانتوموناس

شانکر باکتریایی تبریزی 2

شانكر باكتريائي درخت تبريزي ( در صورت استفاده از مطلب ذکر منبع الزامی است)

                                                         زهرا احمدی   

   شانكر باكتريائي به واسطه xanthomonas populi كه يك باكتري گرم منفي است ايجاد شده و بيشترين خسارت را روي درخت تبريزي ايجاد مي كند .اين بيماري روي درخت تبريزي بسيار مضر است و در صنعت جنگل تا 60% ارزش تجاري چوب را پائين مي آورد . عامل بيماري در 1958 توسط Ride .Aplanobacteriumوسپس در سال 1963Ride عامل باكتري را Aplanobacter تشخيص داد اما اكنون بطور قطع به عنوان Xanthomonas  تقسيم بندي مي شود .شانكر باكتريائي درخت تبريزي از فرانسه ـ بلژيك ـ آلمان ـ هلند ـو... گزارش شده ولي در آسيا مشكوك است .

علائم بيماري : اولين علائم شانكر در بهار روي جوانه هاي سال قبل به صورت برجستگي اطراف بافتهاي جوانه ها ـ تراوش لجن باكتريائي نسبتا سفيد كه بعدا به قهوه اي تغيير رنگ مي دهد. در مواردي به صورت جاري شدن قطراتي از عدسكها ـ تركها ـ روي گره هاي سال قبل ظاهر مي شود در فصل هاي بعد روي كلوني هاي مستعد ـ جوانه هاي عفوني شده سال قبل معمولا از بين مي روند اما گاهي اوقات هم به صورت مناطق سياهرنگ يا بيرنگ باقي مي مانند .روي واريته هاي مستعد شاخه هاي جوان چوبي مي شوند و يا در پايان فصل تركهائي به صورت شانكرهاي بادوام توسعه پيدا مي كند ولي شكل نهائي شانكر بستگي به گونه درخت تبريزي دارد همچنبن شانكر هاي فعال باعث ايجاد يك حفره بزرگ در ساختار چوب مي شوند

منبع inoculum : منبع اصلي باكتري پاتوژني است لعابي كه در بهار از شانكر فعال و تركهاي روي شاخه هاي 1-2 ساله عفوني شده طي فصل قبل ايجاد شدداند است . تراوش باكتري بين درختان مجاور توسط باد و باران منتشر مي شود . همچنين نفوذ باكتري در شاخه هاي توسعه يافته در بين زخم هاي گوشوارك يا زخم پتيول كه در اثر خسارت طوفان يا بيماري و يا وارد آمدن زخم توسط تگرگ و حشرات صورت مي گيرد .

لارو ها نيز يكي ديگر از عوامل انتقال باكتري هستند بوسيله كانال ها يا تونلهائي كه در بهار ايجاد مي كنند .

مبارزه: در بعضي از واريته هاي اروپايي درخت تبريزي يك مكانيزم ايستادگي پلي ژنيك است . براي توليد مثل درون گياهي تبريزي با ايستادگي جديد هزينه و زمان زيادي مصرف مي شود .

Bacterial Leaf Blight (Xantomonas oryzae

Xantomonas oryzae pv. oryzae

                   پريسا شرفخواه                                         

اين بيماري روي برنج انتشار جهاني دارد و بيشتر در مناطق حاره يافت مي شود. ميزان كاهش محصول از اين بيماري 10-15 درصد گزارش شده است.علائم بيماري به صورت سوختگي برگي و پژمردگي است.سوختگي در مرحله پنجه زني اتقاق مي افتد،خطوط ابسوخته ابتدا روي برگها ايجاد شده،سپس كاهي مي شود و تمام بوته مي خشكد وبوته هاي باقي مانده كوتوله و زرد مي شوند.پژمردگي در مناطق حاره از مرحله گياهچه تا اوايل پنجه زني ايجاد مي شود.عامل اصلي انتشار اب ابياري است همچنين حرارت زياد،بارندگي،بادهاي شديد و ازت فراوان از عوامل انتشاراند.ميزبان هاي بيماري اويارسلام،برنج و ... مي باشد.الودگي از طريق زخمهاي ايجاد شده در برگها و ريشه صورت مي گيرد و در اوند چوبي به صورت سيستميك عمل مي كند.بهترين راه مبارزه،كاشت ارقام مقاوم و كنترول عوامل انتشار گزارش شده است.تاثير بيماري روي خوشه به صورت كوچكي،زردي و سبكي دانه هاست. گاهی لكه هاي جوان همراه با ترشحات باكتري است. باکتری در بذور الوده و خاك دوام كمي دارد اين بيماري در ايران روي 2 رقم برنج از امل گزارش شد. 

               

حمله به ریشه جو توسطRhizoctonia solani AG-8

The fungus already penetrated host root cells (white arrows) via appressoria (white arrowheads) at this timepoint 

Rhizoctonia solani

تعيين تنوع ژنتيكي جدايه هاي Rhizoctonia solani از چغندرقند با استفاده از RAPD -PCR و آناليز ITS-rDNA

       سيدباقر محمودي ، محمود مصباح ، حشمت اله رحيميان ، عزيزاله عليزاده ، پيمان نوروزي  

تنوع ژنتيكي جدايه هاي ايراني Phizoctonia solani جدا شده از قسمت هاي پوسيده ريشه چغندرقند، به وسيله RAPD-PCR و آناليز ITS-rDNA مورد بررسي قرار گرفت. از 14 آغازگر تصادفي مورد استفاده در واكنش هاي RAPD-PCR، 12 آغازگر چند شكلي خوبي بين جدايه هاي مورد بررسي نشان دادند. گروه بندي خوشه اي جدايه ها، با استفاده از روش simple matching (نرم افزار 11.5 SPSS version) جدايه هاي متعلق به گروه هاي آناستوموزي مختلف را در سطح تشابه 85% از يكديگر تفكيك نمود. رابطه مشخصي بين تنوع ژنتيكي براساس RAPD-PCR با بيماري زايي، منطقه جغرافيايي و منبع بيمارگر (بافت ميزبان) يافت نشد. در تكثير نواحي فاصله ساز داخلي بين ژن هاي ريبوزومي با استفاده از آغازگرهاي ITS4 و ITS5 يك قطعه DNA به اندازه 680 تا 750 جفت باز رديابي شد. قطعه مذكور با آنزيم هاي برشي Pst1، EcoR1 و Tru91 جدايه هاي متعلق به گروه هاي آناستوموزي مختلف را از يكديگر تميز داد. به نظر مي رسد به كمك RAPD-PCR و يا آناليز ITS-rDNA بتوان گروه هاي مختلف آناستوموزي ريزوكتونيا را تشخيص داد.

انواع تاژک در باکتری ها

زيست شناسي مولکولي و تجزيه و تحليل اسيدهاي نوکلئيک

                                  غلامرضا نوده شريفي

با توسعه سريع و تکنيک هاي تجزيه و تحليل قابل اعتماد، در زيست شناسي مولکولي و شيميايي اطمينان به آزمايشات ميکروبيولوژي سنتي براي جمع آوري اطلاعات فنوتيپي کاهش يافته است. در عوض اطلاعات جديد فراواني در طي روش منديهاي شيميايي يا رده بندي هاي شيميايي بدست آمده شده است. که به عنوان بررسي تنوع شيميايي  در ارگانهاي زندگي و استفاده اين خواص براي تشخيص و رده بندي تعيين شده است. براي برخي از رده ها مانند آکتينوماسيستها (از خانواده آکتينومايستاسه) که در آنها برخي خواص ساخت شناسي و فيزيولوژي مفيد وجود دارد. سيستم هاي شيميايي وابسته به ويژه ديواره سلولي و تجزيه چربيها پر ارزش شده است. براي تمام باکتريها تجزيه اسيدهاي نوکلوئيک اين به نظر نميرسد که در چهار چوب گنجانده شده باشد که طبقه بندي بيوزيستي فيزيولوژيکي وابسته به ريخت شناسي بايد همانند يکديگر انجام گيرد. سطوح  درون سلول که در آن طبقه بندي شيميايي اداره مي شود و نقاط مناسبتري که در سلسله مراتب طبقه بندي اين سطوح به کار مي رود. بنابراين مقايسه ترتيب DNA و خواص پروتئيني الکتروفورتيک (عمل جداسازي مواد حل شده يوني بر اساس تفاوت سرعت حرکت آنها در يک ميدان الکتريکي)در سطوح گونه ها و زير گونه ها مفيد هستند و در ديگر فزونيها تجزيه rRNA به طور فزاينده اي براي تعيين تقسيمات عمده ميان تمامي ترکيبات موجودات زنده استفاده مي شود. تجزيه وابسته به سيستمهاي شيميايي در طبيعت فنوتيک هستند. در بسياري از موارد داده هاي مرتب و وابسته به سيستمهاي شيميايي با استفاده از عوامل مشترک مشابه و طبقه بندي يا دسته بندي محاسبات عددي به منظور توليد نمودار درختي و نمودار پراکنده مشابه به آنچه توسط روشهاي طبقه بندي عددي سنتي ناشي شده تهيه شده اند. روشهاي کلادستيک براي تجزيه داده هاي rRNA و ژنهاي رمز گشاي پروتئين و روابط چند ژنتيکي پديدار شده که براي انعکاس راههاي تکامل نژاد طراحي شده است. ديواره سلولي ريز اندامها وابسته به مکمل يوني واسطه متغير است. مثلا: محدوديت فسفات باعث جايگزين فسفات حاوي اسيدهاي تيکوئيک به واسطه اسيد تيکارونيک در ديواره هاي سلولي باکتريهاي گ رم مثبت مي شود. ترکيب ليپيد غشا توسط دما تحت تاثير قرار مي گيرد. براي دماي پايين اسيدهاي چرب غير اشباع تمايل به غالب شدن دارند و توسط اسيدهاي چرب اشباع در دماي بالا جايگزين ميشوند. ساختار دو طبقه DNA و پيوند هيدروژن بين G و C و A و T مقادير يکسان G+C و A+T را در مولکول نشان مي دهد. برآورد ترتيب همانندي بين مولکولهاي DNA از دو باکتري ممکن است. به دليل اندازه گيري ميزان دوباره به حال طبيعي در آوردن مولکول DNA از دو منبع و پيوند درباره DNA بدست آيد. سنجش پيوند دوباره DNA اختلافي حدود 20% بين 0 تا 100 درصد را تخمين ميزند و بعدا توسط حداکثر پيوند دوباره بدست آمده با رشته هاي DNA مشابه تعيين مي شود. ترتيب گذاري DNA به چنين گستره اي که هم اکنون امکان مقايسه ترتيب ژنهاي فردي براي چندين کشش وجود دارد گسترش يافته است.  سلولهاي گرم مثبت  ابتدا با ليزوزيم گوارش مي شوند. پروتئين توسط گوارش با پروتئاز و دپروتانيزاسيون شيميايي مورد استفاده در فنول يا کلروفروم برداشته مي شود. DNA از پروتئين RNA و کربوهيدرات ها آزاد است. زيرا اين باکتريها مي توانند در سنجش ترکيب براي تعيين ترکيب مبنا يا پيوند دوباره دخالت کنند.

 

رفتار هوشمندانه گياه

                                            بهنوش قدس علوی

ريشه‌هاي گياهان مي‌توانند رفتارهاي هوشمندانه‌ اي از خود بروز دهند( چشايي در گياهان( در دانشگاه تگزاس، استنلي روكس و كولين توماس آنزيمي به نام آپيراز را بر سطح ريشه‌ها كشف كردند كه به آن‌ها توانايي مي‌دهد در جست و جوي ATP توليد شده از سوي ميكروب‌هاي خاك، قطعه‌هاي گوناگون خاك را مزه مزه كنند. آپيراز به صورت پروتئيني متصل به غشا توليد مي‌شود كه بخش داراي فعاليت كاتاليزوري آن به سوي بيرون سلول است. اين آنزيم با فعاليت آبكافتي خود فسفات گاما و بتا را از مولكلول ATP يا ADP جدا مي كند. گياهان به كمك اين آنزيم بخشي از فسفات معدني لازم براي رشد خود را به دست مي‌آورند. اين دو پژوهشگر در آزمايشي نشان دادند، گياهان تراژني كه مقدار زيادي آپيراز توليد مي‌كردند، نسبت به گياهان ديگر، رشد بيش تري داشتند.

مطالعه جمعيت هاي Rhizoctonia solani AG-1-IA جدا شده از برنج در استان مازندران به كمك rDNA RFLP

                  محمدعلي تاجيك قنبري ، حشمت اله رحيميان و عزيزاله عليزاده

 به منظور ارزيابي چند شكلي نواحي حد فاصل ژن هاي 28s و 18s در ژنوم قارچ عامل سوختگي غلاف برنج، 54 جدايه Phizoctonia solani AG-1-IA جدا شده از نواحي مختلف استان مازندران مورد ارزيابي قرار گرفتند. از جدايه ها DNA10-100 ng/ml استخراج و از آنها به عنوان الگو در واكنش هاي PCR استفاده شد. نواحي هدف توسط جفت آغازگرهاي ITS 5، ITS 4 در 25 چرخه گرمايي در PCR تكثير شدند. ارزيابي محصولات PCR به كمك ژل اكريل آميد 8% جدايه ها را به دو گروه عمده تقسيم كرد. در گروه اول (72% جدايه ها) محصول از يك قطعه 700 جفت بازي و در گروه دوم (28% جدايه ها) از سه قطعه با بزرگي 700، 850 و 950 جفت بازي تشكيل شده بود. آنزيم هاي برشگر EcoRI، TaqI، XhoII، HaeIII داراي محل برش و HindIIIو XhoI، BamHI فاقد محل تشخيص و برش در محصولات PCR هر دو گروه بودند. هضم آنزيمي محصولات PCR با آنزيم هاي برشگر فوق جدايه هاي Phizoctonia solani AG-1-IA موجود در هر يك از گروه ها را يكسان منعكس كرد. براساس ارزيابي هاي نشانگر rDNA RFLP جمعيت قارچ عامل سوختگي غلاف برنج شامل دو زير جمعيت با فراواني 28% و 72% در مازندران است.

روند ْطبقه بندي باكتري زانتوموناس

                                                     مريم خراساني

اساس اصلي توصيف و تمايز، طبقه بندي، بر اساس ويژگيهاي مورفولوژيكي ، بيوشيميايي و فيزيولوژي مي باشد. اين شيوه ي طبقه بندي منجر به طبقه بندي مصنوعي شده است كه البته امروزه قابل پذيرش نيست.سه عامل مهم كه سيستم طبقه بندي باكتريها را تغيير داده عبارتنداز:

a-     استفاده از كامپيوتر در تجزيه وتحليل عددي فنوتيپ داده ها

b-    همولوژي DNA به عنوان معيار اصلي براي شرح گونه هاي باكتريايي

c-    روشي كه امروزه مورد قبول است بر اساس ويژگيهاي فنوتيپي ، طبقه بندي شيميايي و ژنوتيپ داده ها مي باشد.

    آخرين پيشرفتهايي كه در طبقه بندي باكتريها صورت گرفته بر اساس شيوه هاي انگشت نگاري ‍‍‍‍‍‍‍ژنومي مي باشد.

طبقه بندي xanthomonas بر اساس پيشرفتهاي جديد در طبقه بندي باكتريها صورت گرفته ، اولين بار اين باكتري در سال 1883 توسط wakker گزارش شد.

ميزبان اختصاصي نقش مهمي در طبقه بندي xanthomonas دارد كه اين شيوه طبقه بندي (بر اساس ميزبان) را " ميزبان جديد، گونه جديد" مي نامند كه البته مختص اين باكتري نمي باشد. شيوه ي جديدي كه براي طبقه بندي باكتري ها در گردهمايي بيماري شناسان گياهي به ثبت رسيده ، طبقه بندي بر اساس گونه هاي نزديك به هم در xanthomonas مي باشد كه اين گونه هاي نزديك به عنوان پاتووار شناسايي مي شوند.

شيوۀ معمول طبقه بندي اين باكتري مطالعه روي گونه هايش مي باشد. از نظر شكل ظاهري اين باكتري : گرم منفي ، ميله اي ، اندازۀ 6/0 -4/0يا 9/2-1/0 ميكرومتر مي باشد. عمدتاً به صورت انفرادي اما به صورت زنجيره اي نخي هم ديده مي شوند.سلولها معمولاً چند قطبي ، تاژكدار ، گاهي اوقات كم تحرك مي باشند.

بيشتر xanthomonas پاتوژن گياهي يا همزيست با گياهان مي باشند ، البته تعدادي از اينها به عنوان پاتوژن انساني هم مي باشند.

پاتوژنهاي گياهي xanthomonas از نظر فنوتيپي خيلي هم شكل هستند كه اين حالت براي پاتووارهاي X.compestris ديده مي شود. ويژگيهاي فنوتيپي متنوع باعث ايجاد پاتووارهاي مختلف مي شود.

Serology:

اساس كار اين روش استفاده از آنتي سرم يك باكتري با آنتي ژن همان باكتري است كه با هم تركيب شده و باند تشكيل مي دهند . كه در روش ابتكاري Elrod و Braun گونه هاي مختلف xanthomonas  بوسيله تستهاي agglutinin و precipitin از هم جدا مي شوند.

 

ازتوباكترهتروتروف آزادزي

                                                          کبری سعیدی

u

^u        ازتوباكتر يكي از جنس هاي مهم هتروتروف آزادزي است.سلول هاي ازتوباكتر نسبتا درشت با قطر متوسط 5/1تا 2ميكرون هستند.ازتوباكترها گرم منفي و داراي حالت چند شكلي از ميله اي با طول 3تا 7ميكرون تا سلول هاي بيضي شكل يا كروي مي باشندكه به صورت منفرد،زوج با دسته هاي نامنظم،گاهي به صورت زنجيره هايي با طول هاي مختلف مشاهده مي شوند.گونه هاي ازتوباكتر فاقد توان اسپورزايي هستند ولي معمولً تشكيل سيست (كيست) مي دهند.متحرك بوسيله تاژك هاي پيراموني و يا غيرمتحرك هستند.در كشت هاي كهنه ،سلول ازتوباكتر متراكم و كروي شده و ديواره آن ضخيم تر مي شود ودر واقع تشكيل سيست مي دهد.سيست ها در مقايسه با فرم رويشي  در برابر شرايط نامساعد محيطي مانند گرما و خشكي مقاوم تر هستند.سيست ها تحت شرايط خشكي ممكن است تا 2300 سال نيز بقاء عمر داشته باشند.در محيط كشت جامد فاقد ازت، كلني ها بعد از 48 ساعت در دماي 30 درجه ظاهر مي شوند و با توجه به نوع قند در طي يك هفته قطري حدود 2تا 6 ميلي متر پيدا مي كنند.كلني ها معمولا صاف ، براق و مات با تحدب كم و چسبنده هستند.باتوجه نوع گونه در كلني ها رنگدانه هاي محلول و نامحلول مختلف توليد مي شود. ازتوباكتر هوازي است و مي تواند در فشار كم اكسيژن نيز به رشد خود ادامه دهد.شيميوارگانوتروف بوده و مي تواند از قند ها ،الكل ها و نمك اسيدهاي آلي براي رشد و تكثير استفاده كند. قادر به تثبيت نيتروژن مولكولي به حالت غير همزيست مي باشد و مي تواند حداقل 10 ميلي گرم نيتروژن مولكولي را به ازاء هر يك گرم از كربو هيدرات مصرفي (معمولا گلوكز) تثبيت نمايد. موليبدن براي تثبيت نيتروژن ضروري است اما مي تواند از واناديم نيز به جاي آن استفاده كند. ازتو باكتر داراي آنزيم كاتالاز و همين طور سوپر اكسيد ديسموتاز فعالي است كه براي حفاظت آنزيم نيتروژناز از اكسيژن ضروري است. ازتوباكتر براي رشد اپتيمم نياز به آهن كافي دارد اما در محيط هاي با آهن كم نيز با توليد سيدروفورها قادر به رشد است. همه گونه هاي ازتوباكتر به غلظت 2/0 ميلي گرم استرپتومايسين در ليتر حساس هستندولي در همين غلظت به اكسي تتراسايكلين ، مقاوم مي باشند. ازتباكتر در زيست گاهايي مانند خاك ،سطح برگ ، آبهاي شيرين و در مناطق مختلف از حاره اي تا قطبي و در محدوده PH،3تا 9 يافت مي شود . گونه غالب ازتوباكتر بستگي به PH ، دما و مقدار رطوبت خاك دارد.در نواحي معتدل ، كروكوكوم گونه غالب است و عمدتآ در خاك هاي خنثي تا قليايي يافت مي شود. گونه وينلاندي در خاك هاي قليايي نواحي حاره و نيمه حاره يافت مي شود.ميزان كلسيم خاك كه از عناصر ضروري براي تشكيل سيست است در توزيع ازتوباكتر مؤثر مي باشد.ازتوباكتر معمولا به حالت آزادزي در لايه سطحي خاك و همچنين در ريزوسفر گياهان مختلف يافت مي شود. با افزايش عمق خاك ، جمعيت ازتوباكتر كاهش پيدا مي كند.تحقيقات نشان مي دهد كه با افزايش ارتفاع منطقه ، ظرفيت تثبيت نيتروژن افزايش مي يابد و اين مسئله را مي توان به كاهش فشار اكسيژن در ارتفاعات نسبت داد كه كار تثبيت نيتروژن در دي ازوتروف هاي آزاد زي از جمله ازتوباكترها را تسهيل مي كند. گونه هاي ازتوباكتر به غير از پاسپالي با توجه به فعاليت تنفسي زياد در منطقه ريزوپلان (سطح ريشه) يافت نمي شوند.يكي از عوامل محدودكننده رشد ازتوباكتر در محيط هاي كمبود مواد آلي است .تحقيقات در روسيه نشان مي دهد كه ⁰حداكثر جمعيت ازتوباكتر در خاك هاي تحت كشت كه كود دامي داده شده اند مي باشد. معمولا مقدار ازتوباكتر در گرم خاك كمتر از 10 به توان 4 است ، در خاك هاي زراعي استان تهران بر اساس گزارش متوسط تعداد جمعيت ازتو باكتر5/1 در 10 به توان 3 در هر گرم خاك مي باشد.

 

 

 

     

آمار بازدیدکنندگان کشور های مختلف از وبلاگ

آمار کشور بازديدکننده ها
رتبه	کشور	تعداد ورودی	درصد	نمودار
1	ج. ا. ايران	6990	70.87%
2	انگلستان	2550	25.85%
3	آمريکا	103	1.04%
4	امارات	33	0.33%
5	کويت	22	0.22%
6	آلمان	21	0.21%
7	کانادا	12	0.12%
8	فرانسه	11	0.11%
9	ترکيه	11	0.11%
10	هلند	10	0.1%
11	سوئد	8	0.08%
12	هند	8	0.08%
13	مکزيک	7	0.07%
14	افغانستان	5	0.05%
15	مالزي	5	0.05%

بررسي چند شكلي DNA در گروه هاي آناستوموزي Rhizoctonia solani در مزارع چغندرقند استان خراسان با استفا

          حسن مومني ، جواد مظفري ، ماهرخ فلاحتي رستگار ، بهروز جعفرپور  

مرگ گياهچه و پوسيدگي ريزوكتونيايي ريشه چغندرقند در اثر Rhizoctonia solani هر ساله خسارت زيادي به محصول چغندرقند در استان خراسان وارد مي كند. در اين تحقيق چند شكلي DNA در جدايه هاي بيماري زاي R. solani متعلق به گروه هاي آناستوموزي AG2-2 و AG4 با استفاده از روش Random Amplified Polymorphic DNA (RAPD) بررسي گرديد. به اين منظور پس از استخراج DNA با استفاده از روش CTAB، واكنش هاي RAPD با استفاده از سري آغازگرهاي UBC انجام شد. هفت آغازگر به نام هاي UBC228، UBC222، UBC199، UBC196، UBC82، UBC53، UBC6 چند شكلي بالايي بين جدايه هاي قارچ نشان دادند. به طوري كه از كل 105 باند DNA ايجاد شده 78 باند (حدود 75% باندها) چند شكل بودند. با كمك نرم افزارMW Photocapt الگوي باندهاي DNA جدايه ها با هر يك از آغازگرهاي چندشكل مشخص و ماتريس صفر و يك براساس حضور (1) و عدم حضور (0) باند تشكيل شد. بر اساس اين ماتريس صفر و يك و با كمك ضريب تشابه نئي، ماتريس فاصله ژنتيكي جدايه ها به دست آمده و دندروگرام فاصله ژنتيكي جدايه ها ترسيم شد. جدايه هاي متعلق به يك گروه آناستوموزي قرابت ژنتيكي بيشتري نسبت به جدايه هاي ديگر نشان دادند. گروه بندي جدايه ها نشان داد كه گرچه عامل اقليمي، عامل مهمي در گروه بندي به حساب مي آيد ولي اهميت آن به اندازه عامل گروه آناستوموزي نيست. عامل بيماري زايي نيز به عنوان يك عامل جانبي در گروه بندي جدايه ها موثر بوده، ولي مانند گروه آناستوموزي به عنوان يك عامل اصلي و مهم در گروه بندي به حساب نمي آيد. نتايج حاصل از اين تحقيق نشان مي دهد كه نشانگر مولكولي RAPD جهت بررسي تنوع بين جدايه هاي قارچ R. solani ابزار مناسبي است.

Pyricularia grisea

Armillaria mellea

Podosphaera fusca